El virus del s铆ndrome respiratorio y reproductivo porcino es muy contagioso en las piaras de cerdos.聽Puede transmitirse por contacto directo o por aerosoles infecciosos. Se han utilizado vacunas para limitar la propagaci贸n de la enfermedad, pero a menudo se les considera ineficaces. es por esta raz贸n que te dejamos algunas maneras de c贸mo monitorizar de forma eficiente la circulaci贸n de tan perjudicial virus.
Monitorizaci贸n en maternidad
Para determinar si una granja es estable al PRRSV se debe confirmar que no nacen lechones vir茅micos. La transmisi贸n transplacentaria del PRRSV es enormemente eficiente, particularmente al final de la gestaci贸n, y por lo tanto, si existe viremia en las reproductoras, se producir谩 muy probablemente la infecci贸n de los fetos in 煤tero.
Para ello debemos monitorizar la maternidad. Lo ideal es analizar los lechones al nacimiento, pero por la dificultad para muestrear esos animales, con frecuencia se muestrean animales poco antes del destete. Si los resultados son negativos, confirman la ausencia de circulaci贸n de virus en las reproductoras. Si son positivos debemos tomar muestras al nacimiento para determinar si los lechones nacieron infectados o se han infectado por contaminaci贸n cruzada durante la lactaci贸n.
La muestra de referencia para la determinaci贸n de la presencia del virus es el suero. Inicialmente se deben tomar muestras de sangre de un total de聽30 lechones, lo que nos permitir铆a detectar una prevalencia del 10% con un nivel de confianza del 95% en muestras aleatorias. Al muestrear animales con signos de enfermedad la sensibilidad se estima que es m谩s alta. En situaciones de muy baja circulaci贸n v铆rica, como las etapas finales de un programa de estabilizaci贸n o granjas consideradas estables cl铆nicamente, esta intensidad de muestreo puede no ser suficiente y se recomienda aumentar el tama帽o de muestra a 60, lo que permite detectar prevalencias del 5% o superiores. Debido al bajo nivel de circulaci贸n v铆rica, se deben realizar muestreos sistem谩ticos y seriados durante largos periodos de tiempo ya que es posible que tras varios meses de resultados negativos encontremos alguna muestra positiva. Se deber铆an monitorear como m铆nimo los lechones de un ciclo reproductivo completo una vez que empezamos a encontrar resultados negativos.
Ante la dificultad para tomar muestras de sangre en animales j贸venes, el impacto en su bienestar y el elevado tama帽o de muestra necesario para detectar prevalencias tan bajas, se han desarrollado sistemas de muestreo alternativos. Una opci贸n es la utilizaci贸n de los聽fluidos de procesado, correspondientes al exudado a partir de los test铆culos y las colas. Dado que este exudado est谩 compuesto fundamentalmente de plasma y sangre, se suele encontrar el virus cuando los lechones son vir茅micos, por lo que constituye una buena opci贸n para aumentar el tama帽o de muestra, manteniendo una buena sensibilidad en comparaci贸n con el an谩lisis de muestras de suero. Hay que tener en cuenta que聽el uso de fluidos de procesado solo es v谩lido en las granjas donde se practique la castraci贸n sistem谩tica. En los fluidos procedentes solo de colas cortadas, la sensibilidad es mucho m谩s baja e insuficiente para poder determinar con fiabilidad el estatus de la granja聽(Vilalta et al., 2018).
La聽obtenci贸n de sangre procedente de los cordones umbilicales聽ha demostrado ser una opci贸n viable para la detecci贸n del PRRSV en lechones neonatos (Martin-Valls et al., 2018). Aunque la muestra es m谩s f谩cil de obtener, es necesario recogerla en torno al momento del nacimiento y hay que tener en cuenta que es posible detectar contaminaci贸n ambiental. No obstante, es una alternativa fiable que permite monitorizar la maternidad con facilidad y es preferible a los fluidos de procesado solo de colas.
Los聽fluidos orales聽tambi茅n se han identificado como una muestra v谩lida. El problema en este caso es que los lechones en lactaci贸n no suelen sentirse atra铆dos por las cuerdas por lo que el tiempo de muestreo es largo y la representatividad de la camada baja, lo que los convierte en una opci贸n no viable. Para intentar mejorar la utilidad de la t茅cnica se ha optado por incluir a la madre, en los denominados fluidos familiares, ya que el ejemplo de la madre estimula a los lechones a morder la cuerda y aumenta la sensibilidad de la t茅cnica. No obstante, es un sistema en estudio y no se considera la mejor opci贸n. Adem谩s, se ha descrito la posibilidad de聽tomar muestras de la superficie de la ubre de la cerda聽utilizando toallitas impregnadas en l铆quido bajo el razonamiento de que, si los lechones est谩n infectados, excretar谩n virus en fluidos orales y contaminar谩n la ubre. Aunque hay pocas experiencias y es pronto para evaluar el valor de este sistema, los resultados son esperanzadores, al igual que los obtenidos con el聽muestreo de superficies de la sala de lactaci贸n. En este caso, sin embargo, igual que hemos indicado para los cordones umbilicales, es posible obtener muestras positivas de camadas negativas, lo que indica la detecci贸n de ARN v铆rico procedente de contaminaci贸n ambiental por lo que la interpretaci贸n de los resultados debe ser cuidadosa (Vilalta et al, 2019).
Por 煤ltimo, se est谩 estudiando la posibilidad de utilizar recolecci贸n de muestras agregadas de partes de cad谩veres, especialmente聽lenguas, para determinar la presencia o ausencia del virus en animales nacidos muertos (Baliellas, 2020).
Monitorizaci贸n de reproductoras
Otro punto clave es el an谩lisis de las cerdas de renovaci贸n. 脡ste debe incluir un muestreo a la entrada y otro a la salida de la cuarentena mediante ELISA y RT-PCR para confirmar su estatus sanitario, monitorizar la eficiencia de la adaptaci贸n y conocer el momento de la infecci贸n, si 茅sta se produce. Conviene utilizar herramientas como la secuenciaci贸n para confirmar la identidad de los virus encontrados durante el periodo de adaptaci贸n (i.e. vacunal o cepa de campo). Aunque no es suficiente para confirmar que las cerdas no suponen un riesgo para la granja, debemos comprobar que, al menos, no sean vir茅micas cuando entren en las instalaciones de gestaci贸n.
Por otro lado, la monitorizaci贸n de las reproductoras es extremadamente dif铆cil. La聽serolog铆a聽tiene escaso valor ya que no existen vacunas marcadas en el mercado, los valores S/P son altamente variables entre individuos y dependientes a su vez de la cepa que causa la infecci贸n (Kim et al., 2007), y los animales permanecen seropositivos durante muchos meses. Adem谩s con frecuencia no se produce una respuesta secundaria tras una reinfecci贸n y, cuando se produce, es muy r谩pida por lo que la toma de muestras pareadas suele ser poco 煤til para determinar recirculaciones de virus. Del mismo modo, la monitorizaci贸n mediante RT-PCR no es pr谩ctica, ya que el n煤mero de animales vir茅micos en un momento determinado es muy bajo y la viremia en animales adultos y con inmunidad previa es muy corta. Todo ello hace que, en la pr谩ctica, la capacidad de detecci贸n sea muy baja y no merezca la pena. En funci贸n de todo lo anteriormente comentado podemos concluir que聽la monitorizaci贸n de cerdas en producci贸n solo es 煤til en granjas negativas y para el diagn贸stico de brotes de la enfermedad.
Por el contrario, la monitorizaci贸n de animales en crecimiento es bastante f谩cil y se puede utilizar casi cualquier muestra y t茅cnica. La 煤nica consideraci贸n ser铆a utilizar un tama帽o de muestra y un sistema de muestreo que permita obtener una buena representatividad de la poblaci贸n estudiada en funci贸n del nivel de prevalencia esperado.
Fuente:
https://www.3tres3.com/articulos/%C2%BFcomo-monitorizar-de-forma-eficiente-la-circulacion-del-prrsv_45059/
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5508380
